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Vol. 115. Issue 3.
Pages 258-264 (March 2024)
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Vol. 115. Issue 3.
Pages 258-264 (March 2024)
DOCUMENTO DE CONSENSO
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Consenso de terminología en microscopia confocal de reflectancia en español mediante método Delphi
Reflectance Confocal Microscopy Terminology in Spanish: A Delphi Consensus Study
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A. Abarzua-Arayaa,b,c,d, J. Bañulsb, H. Caboc, C. Carrerad,e,f,g,h,i,j,k, R. Gamoe, S. Gonzálezf, N. Jaimesg, C. Navarrete-Dechenta, J. Pérez Ankerd, R. Roldán-Marính, S. Segurai, O. Yélamosj, S. Puigd,e,f,g,h,i,j,k,
Corresponding author
spuig@clinic.cat

Autor para correspondencia.
, J. Malvehyd,e,f,g,h,i,j,k
a Melanoma Unit, Dermatology Department, Pontificia Universidad Católica de Chile, Santiago, Chile
b Dermatology Department, Hospital General Universitario de Alicante Dr. Balmis, ISABIAL, Alicante, España
c Universidad de Buenos Aires, Buenos Aires, Argentina
d Melanoma Unit, Dermatology Department, Hospital Clínic, Universitat de Barcelona, Institut d’Investigacions Biomèdiques August Pi i Sunyer (IDIBAPS), Barcelona, España
e Hospital Fundación Alcorcón, Madrid, España
f Department of Medicine and Medical Specialties, Alcalá de Henares University, Madrid, España
g Dr Phillip Frost Department of Dermatology & Cutaneous Surgery, and Sylvester Comprehensive Cancer Center, University of Miami Miller School of Medicine, Miami, Florida, Estados Unidos
h Clínica de Onco-dermatología, División de Investigación, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad de México, México
i Dermatology Department, Hospital del Mar, Institut Hospital del Mar d’Investigacions Mèdiques (IMIM), Barcelona, Universitat de Vic-Universitat central de Catalunya (UVIC), España
j Dermatology Department, Hospital de Santa Creu i Sant Pau de Barcelona, IIB SANT PAU, Universitat Autònoma de Barcelona, Barcelona, España
k Centro de Investigación Biomédica en Red de Enfermedades Raras, Instituto de Salud Carlos III, Barcelona, España
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Tabla 1. Nomenclatura términos MCR para lesiones melanocíticas
Tabla 2. Nomenclatura términos MCR para carcinoma basocelular
Tabla 3. Nomenclatura términos MCR para Carcinoma Espinocelular y Queratosis actínica
Tabla 4. Nomenclatura términos MCR para Lentigo Solar, Queratosis Seborreica y Queratosis Liquenoide
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Resumen

La terminología usada para describir los diferentes hallazgos en la microscopía confocal de reflectancia (MCR), tanto en lesiones melanocíticas, como en no melanocíticas se ha consensuado en inglés. En el presente trabajo, se proponen los términos en español que mejor interpretan estos conceptos ya descritos para la MCR, mediante el consenso de expertos de distintas nacionalidades de habla hispana y utilizando el método DELPHI para el acuerdo final. Se obtuvieron 52 términos en total, de los cuales 28 fueron para lesiones melanocíticas y 24 para lesiones no melanocíticas. El uso de la nomenclatura propuesta permitirá una homogeneización y mejor entendimiento de las estructuras; una descripción más estandarizada en los registros clínicos y una mejor interpretación de estos informes por otros dermatólogos.

Palabras clave:
Microscopia confocal de reflectancia
Consenso
Terminología
Nomenclatura
Melanoma
Carcinoma basocelular
Abstract

The terminology used to describe reflectance confocal microscopy (RCM) findings in both melanocytic and nonmelanocytic lesions has been standardized in English. We convened a panel of Spanish-speaking RCM experts and used the Delphi method to seek consensus on which Spanish terms best describe RCM findings in this setting. The experts agreed on 52 terms: 28 for melanocytic lesions and 24 for nonmelanocytic lesions. The resulting terminology will facilitate homogenization, leading to a better understanding of structures, more standardized descriptions in clinical registries, and easier interpretation of clinical reports exchanged between dermatologists.

Keywords:
Reflectance confocal microscopy
Consensus
Terminology
Nomenclature
Melanoma
Basal cell carcinoma
Full Text
Introducción

La microscopia confocal de reflectancia (MCR) es una técnica diagnóstica no invasiva que permite visualizar in vivo la superficie cutáneo-mucosa en tiempo real con resolución celular y precisión cuasi-histológica, hasta una profundidad de 200-250μm1-3. Sus beneficios en el diagnóstico de lesiones melanocíticas4-13 y no melanocíticas14-35 ha sido demostrado en múltiples publicaciones, metaanálisis y revisiones sistemáticas36-40. Hasta ahora la terminología usada para describir los diferentes hallazgos a la MCR en piel normal, así como en lesiones melanocíticas41,42 y no melanocíticas43 se ha consensuado en inglés. Esto trae como consecuencia una dificultad en la descripción en registros clínicos, la interpretación de estos informes por otros dermatólogos y la realización de estudios que involucren la MCR en español. Hasta donde sabemos, a la fecha no existe un consenso oficial de expertos respecto a los términos de MCR.

Objetivo

El presente trabajo tiene por objetivo obtener un consenso sobre la nomenclatura en español de la terminología más utilizada en lesiones melanocíticas y no melanocíticas en la MCR.

Métodos

Se realizó una revisión bibliográfica en MEDLINE (Pubmed) de la terminología en inglés más frecuentemente utilizada en la MCR, en artículos, revisiones sistemáticas42,43 y del artículo de consenso de terminología en inglés41. Se emplearon en la búsqueda los términos: reflectance confocal microscopy; RCM; terminology; glossary; melanoma, melanocytic lesions, nonmelanocytic lesions; basal cell carcinoma; squamous cell carcinoma; actinic keratosis; seborrheic keratosis; solar lentigo; lichen planus-like keratosis. Se identificaron los términos de las estructuras más frecuentemente reportadas a la MCR del melanoma, nevus atípico, carcinoma basocelular (CBC), carcinoma espinocelular (CEC), queratosis actínicas, queratosis seborreicas, lentigo solar y queratosis liquenoides. Aquellas estructuras o términos que se consideraron equivalentes se simplificaron y otras se describieron como sinónimos. Las lesiones se clasificaron en 2grandes grupos: melanocíticas y no melanocíticas. Las lesiones no melanocíticas se clasificaron en 3grupos: el primer grupo solo con carcinoma basocelular; el segundo grupo, carcinoma espinocelular y queratosis actínica, y el tercer grupo, lentigo solar, queratosis seborreica y queratosis liquenoide.

Se realizó un consenso con la metodología e-Delphi en el que se valoró el acuerdo entre 14 expertos en microscopia confocal de reflectancia en lengua española (España, Chile, Argentina, Colombia y México). Se realizó la invitación a participar del estudio por email y quienes aceptaron participar se les envió un enlace para acceder a la encuesta. Para este fin se utilizó la plataforma Google Forms (https://docs.google.com/forms/u/0/). En la primera vuelta Delphi se incluyeron las alternativas muy de acuerdo, de acuerdo y en desacuerdo. En aquellos términos donde se alcanzó un acuerdo superior al 80% para la alternativa muy de acuerdo se consideraron como óptimos no requiriendo una nueva ronda de Delphi. En aquellos términos donde el acuerdo fue inferior al 80% para la alternativa muy de acuerdo se requirió una segunda vuelta. Los expertos que no estaban completamente de acuerdo con un término seleccionado en español podían proponer un término alternativo para la siguiente ronda. En la segunda vuelta se incluyeron las alternativas de acuerdo y en desacuerdo. En aquellos términos donde se alcanzó un acuerdo superior al 80% para la alternativa de acuerdo se consideraron como óptimos no requiriendo una nueva ronda de Delphi. En esta ronda solo en el término en inglés «nests of basaloid cells» los participantes tuvieron que votar entre los términos en español: «nidos basaloides» o «nidos hiporrefractiles», decidiéndose el ganador por mayoría simple. No fue necesario realizar una tercera ronda.

Resultados

De los 14 expertos invitados a participar por email, todos (N=14) respondieron la primera vuelta Delphi en la que se incluyeron un total de 52 términos en inglés y su propuesta en español. De estos, 28 términos fueron para lesiones melanocíticas y 24 términos para lesiones no melanocíticas. Los 24 términos para lesiones no melanocíticas corresponden a 9 términos para carcinoma basocelular, 9 para carcinoma espinocelular y queratosis actínica y 6 para lentigo solar, queratosis seborreica y queratosis liquenoide. En la primera vuelta Delphi se alcanzó un acuerdo superior al 80% para la alternativa muy de acuerdo en 25 de 28 términos de las lesiones melanocíticas (tabla 1), entre ellos: patrón en panal de abejas, patrón en empedrado, epidermis desorganizada (fig. 1A); células pagetoides, células dendríticas, células pleomórficas, células redondas (fig. 1B y C); papilas mal delimitadas (fig. 2A), engrosamiento juntural (fig. 2B),células atípicas (fig. 2C y D), y en 19 de 24 términos de las lesiones no melanocíticas; en 7 de 9 para carcinoma basocelular (tabla 2), entre ellos: polarización, hendidura, empalizada periférica (fig. 3B); en 8 de 9 para carcinoma espinocelular y queratosis actínica (tabla 3), entre ellos: desorden arquitectural, patrón en panal de abejas atípico (fig. 3A), y en 4 de 6 para lentigo solar, queratosis seborreica, y queratosis liquenoide, entre ellos: quistes de millium, invaginaciones epidérmicas repletas de queratina y proyecciones bulbosas (tabla 4).

Tabla 1.

Nomenclatura términos MCR para lesiones melanocíticas

Término MCR inglés  Término MCR español  % muy de acuerdo Delphi primera ronda  % acuerdo Delphi segunda ronda 
Honeycomb pattern  Patrón en panal de abejas  100%  – 
Cobblestone pattern  Patrón en empedrado  100%  – 
Atypical honeycomb pattern  Patrón en panal de abejas atípico  100%  – 
Atypical cobblestone pattern  Patrón en empedrado atípico  100%  – 
Disarranged epidermis  Epidermis desorganizada  100%  – 
Ring pattern  Patrón en anillos  93,3%  – 
Meshwork pattern  Patrón en malla  100%  – 
Clod pattern  Patrón globular  86,7%  – 
Mixed pattern  Patrón mixto  100%  – 
Edged papillae  Papilas bien delimitadas  100%  – 
Nonedge papillae  Papilas mal delimitadas  100%  – 
Junctional thickening  Engrosamiento juntural  86,7%  – 
Bridging/short interconnections/mitochondria-like structures  Estructuras tipo mitocondria  73,3%  100% 
Medusa head-like structures  Estructuras tipo cabeza de medusa  100%  – 
Pagetoid cells  Células pagetoides  100%  – 
Pleomorphic cells  Células pleomórficas  100%  – 
Dendritic cells  Células dendríticas  100%  – 
Roundish/round cells  Células redondas  93,3%  – 
Atypical cells  Células atípicas  100%  – 
Sheet-like structures  Estructuras en sábana  93,3%  – 
Atypical cells in the dermal papilla  Células atípicas intrapapilares  86,7%  – 
Junctional nest  Nidos de la unión  93,3%  – 
Dense nest  Nidos densos  100%  – 
Discohesive/irregular nest  Nidos discohesivos  80%  92,3% 
Cerebriform nest  Nidos cerebriformes  100%  – 
Plump cells  Melanófagos  80%  100% 
Inflammatory cells  Células inflamatorias  100%  – 
Thickened collagen  Fibras colágenas engrosadas  93,3%  – 
Figura 1.

Imágenes de microscopia confocal en estratos epidérmicos altos. Superior (A). Se observa patrón en empedrado (círculo rojo), patrón en panal de abejas (círculo amarillo) y epidermis desorganizada con presencia de células dendríticas (círculo verde). Imágenes inferiores. Detalle de células en crecimiento pagetoide. A la izquierda (B) se observan células dendríticas (flecha azul). A la derecha (C) se observan células pleomórficas, redondas (flecha roja) y dendríticas (flecha azul).

(0.42MB).
Figura 2.

Imágenes de microscopia confocal de la unión dermoepidérmica. Izquierda superior (A). Se observa un patrón en anillos y empedrado, con papilas mal definidas y células dendríticas que protruyen en la papila y llegan a configurar la estructura tipo mitocondria (círculo verde). Derecha superior (B) se observan engrosamientos junturales (rojo) y papilas elongadas (amarillo). Izquierda inferior (C) se observa pérdida de la arquitectura normal de la unión dermoepidérmica. Derecha inferior (D), a mayor aumento, se observan papilas mal delimitadas, con células atípicas (dendríticas y redondas).

(0.46MB).
Tabla 2.

Nomenclatura términos MCR para carcinoma basocelular

Término MCR inglés  Término MCR español  % muy de acuerdo Delphi primera ronda  % acuerdo Delphi segunda ronda 
Streaming/polarization  Polarización  86,7%  – 
Architectural disorder  Desorden arquitectural  93,3%  – 
Palisading  Empalizada  100%  – 
Clefting  Hendidura  100%  – 
Cord-like structures/basaloid cords  Cordones basaloides  93,3%  – 
Tumor island/nest of basaloid cells  Nidos basaloides  60%  61,5%a 
Dark silhouettes  Siluetas oscuras  100%  – 
Linear blood vessels  Vasos sanguíneos horizontalizados  73,3%  84,6% 
Rolling leucocytes  Tráfico leucocitario  93,3%  – 
a

Término seleccionado por mayoría simple.

Figura 3.

A la izquierda (A) observamos un desorden arquitectural epidérmico con presencia de vasos en botón, uno de ellos indicado en círculo rojo, así como un patrón en panal de abejas atípico (círculo amarillo), imagen característica de enfermedad de Bowen. A la derecha (B) se observa polarización de núcleos (círculo azul), vasos horizontalizados (flechas verdes), nidos basaloides (círculo verde), hendidura (flecha roja) y empalizada periférica (flecha amarilla) hallazgos característicos en un carcinoma basocelular.

(0.09MB).
Tabla 3.

Nomenclatura términos MCR para Carcinoma Espinocelular y Queratosis actínica

Término MCR inglés  Término MCR español  % muy de acuerdo Delphi primera ronda  % acuerdo Delphi segunda ronda 
Scale  Escama  100%  – 
Hyperkeratosis  Hiperqueratosis  100%  – 
Parakeratosis  Paraqueratosis  100%  – 
Atypical honeycomb pattern  Patrón en panal de abeja atípico  100% 
Architectural disarray  Desorden arquitectural  100%  – 
Keratinocyte pleomorphism  Queratinocitos pleomórficos  100%  – 
Dyskeratotic cells  Células disqueratósicas  100%  – 
Elongated dermal papillae  Papilas elongadas  93,3%  – 
Buttonhole vessels/dilated looping blood vessels within papillae  Vasos en botón  73,3%  92,3% 
Tabla 4.

Nomenclatura términos MCR para Lentigo Solar, Queratosis Seborreica y Queratosis Liquenoide

Término MCR inglés  Término MCR español  % muy de acuerdo Delphi primera ronda  % acuerdo Delphi segunda ronda 
Milia-like cysts  Quistes de millium  93,3% 
Keratin-filled invaginations  Invaginaciones epidérmicas repletas de queratina  93,3%  – 
Round to polycyclic dermal papillae  Unión dermoepidérmica policíclica  73,3%  92,3% 
Bulbous projections  Proyecciones bulbosas  100%  – 
Plump cells  Melanófagos  60%  100% 
Bright stellate spots  Células inflamatorias  93,3%  – 

La segunda vuelta fue enviada por email y fue respondida por 13 de los 14 expertos. Se revaluaron en esta ronda 8 términos en total, 3 términos correspondientes a lesiones melanocíticas y 5 términos a lesiones no melanocíticas y se alcanzó un acuerdo superior al 80% en 7 de ellos; 3 para lesiones melanocíticas (tabla 1), que corresponden a estructuras tipo mitocondria (fig. 2A), nidos discohesivos y melanófagos, y 4 para lesiones no melanocíticas que se desglosan en, 1 para carcinoma basocelular que corresponde a vasos sanguíneos horizontalizados (tabla 2) (fig. 3B); 1 para carcinoma espinocelular y queratosis actínica que corresponde a vasos en botón (tabla 3) (fig. 3A), y 2 para lentigo solar, queratosis seborreica y queratosis liquenoide, que corresponden a unión dermoepidérmica policíclica y melanófagos (tabla 4). El término nests of basaloid cells se seleccionó por mayoría simple resultando elegido el término en español nidos basaloides con el 61,5% (fig. 3B).

Discusión

El evidente dominio y priorización de la lengua inglesa en publicaciones científicas, atlas y libros de texto conlleva el uso de terminología anglosajona que no siempre se traduce de forma homogénea ni menos intuitiva al español. Esto determina una considerable variación en el uso y traducción (muchas veces autogestionada o basada en cada centro médico) de los términos, muchos de los cuales ya tienen variaciones en inglés. A ello se suma que cada vez es mayor el número de dermatólogos de habla hispana que se forman en centros de Europa o Estados Unidos en técnicas diagnósticas no invasivas como la MCR. Si bien la MCR no es utilizada en forma masiva, su uso se ha ido extendiendo de forma global, y existen varios centros en España44, algunos en México, Colombia, Argentina y Chile que cuentan actualmente con esta tecnología diagnóstica. En este sentido, se hace imperativo tener un lenguaje común para los términos en español que actualmente están descritos en inglés ya sea para crear futuras publicaciones, redactar informes médicos, para explicarle a nuestros pacientes los hallazgos en este examen y para que la comunidad de dermatólogos de habla hispana, aunque no usen esta tecnología, puedan comprender estos informes. Si bien existen algunos trabajos que han logrado un consenso de la terminología de MCR in vivo en inglés41, creemos que era el momento de realizar un glosario en español de consenso entre expertos. Finalmente, en Actas Dermatosifilográficas coexisten 2versiones del mismo artículo científico, en inglés y en español (p. ej., El papel de la microscopia confocal en el diagnóstico del melanoacantoma)45,46, por lo que es muy necesario tener un consenso de terminología en español con su correspondiente correlación en lengua inglesa. En el presente trabajo, se proponen los términos que mejor interpretan los conceptos consensuados en inglés para la nomenclatura en lesiones melanocíticas y no melanocíticas descritas para la MCR, mediante el consenso de expertos de distintas nacionalidades de habla hispana y utilizando el método DELPHI para el acuerdo final.

Limitaciones

Relativo bajo número de participantes limitados a centros académicos que disponen de la técnica. Se usó como base los términos en inglés ya existentes lo que da poca cabida a variaciones.

Conclusiones

El uso de la nomenclatura propuesta para MCR en español permitirá una homogeneización y mejor entendimiento de las estructuras y su correlación con la histopatología, tanto de las lesiones melanocíticas, como de las no melanocíticas. Esto permitirá una descripción más estandarizada en los registros clínicos, una mejor interpretación de estos informes por otros dermatólogos, una adecuada caracterización de las estructuras tanto para la docencia como para la realización de estudios que involucren la MCR en español.

Bibliografía
[1]
M. Rajadhyaksha, A. Marghoob, A. Rossi, A.C. Halpern, K.S. Nehal.
Reflectance confocal microscopy of skin in vivo: From bench to bedside.
Lasers Surg Med., 49 (2017), pp. 7-19
[2]
M. Rajadhyaksha, M. Grossman, D. Esterowitz, R.H. Webb, R.R. Anderson.
In vivo confocal scanning laser microscopy of human skin: Melanin provides strong contrast.
J Invest Dermatol., 104 (1995), pp. 946-952
[3]
M. Rajadhyaksha, S. Gonzalez, J.M. Zavislan, R.R. Anderson, R.H. Webb.
In vivo confocal scanning laser microscopy of human skin ii: Advances in instrumentation and comparison with histology.
J Invest Dermatol., 113 (1999), pp. 293-303
[4]
S. Segura, S. Puig, C. Carrera, J. Palou, J. Malvehy.
Development of a two-step method for the diagnosis of melanoma by reflectance confocal microscopy.
J Am Acad Dermatol., 61 (2009), pp. 216-229
[5]
V. Ahlgrimm-Siess, R. Hofmann-Wellenhof, T. Cao, M. Oliviero, A. Scope, H.S. Rabinovitz.
Reflectance confocal microscopy in the daily practice.
Semin Cutan Med Surg., 28 (2009), pp. 180-189
[6]
V. Ahlgrimm-Siess, C. Massone, A. Scope, R. Fink-Puches, E. Richtig, I.H. Wolf, et al.
Reflectance confocal microscopy of facial lentigo maligna and lentigo maligna melanoma: a preliminary study.
Br J Dermatol., 161 (2009), pp. 1307-1316
[7]
G. Pellacani, M. Vinceti, S. Bassoli, R. Braun, S. Gonzalez, P. Guitera, et al.
Reflectance confocal microscopy and features of melanocytic lesions: an internet-based study of the reproducibility of terminology.
Arch Dermatol., 145 (2009), pp. 1137-1143
[8]
P. Guitera, G. Pellacani, K.A. Crotty, R.A. Scolyer, L.X. Li, S. Bassoli, et al.
The impact of in vivo reflectance confocal microscopy on the diagnostic accuracy of lentigo maligna and equivocal pigmented and nonpigmented macules of the face.
J Invest Dermatol., 130 (2010), pp. 2080-2091
[9]
P. Guitera, S.W. Menzies, C. Longo, A.M. Cesinaro, R.A. Scolyer, G. Pellacani.
In vivo confocal microscopy for diagnosis of melanoma and basal cell carcinoma using a two-step method: Analysis of 710 consecutive clinically equivocal cases.
J Invest Dermatol., 132 (2012), pp. 2386-2394
[10]
G. Pellacani, B. De Pace, C. Reggiani, A.M. Cesinaro, G. Argenziano, I. Zalaudek, et al.
Distinct melanoma types based on reflectance confocal microscopy.
Exp Dermatol., 23 (2014), pp. 414-418
[11]
I. Alarcon, C. Carrera, J. Palou, L. Alos, J. Malvehy, S. Puig.
Impact of in vivo reflectance confocal microscopy on the number needed to treat melanoma in doubtful lesions.
Br J Dermatol., 170 (2014), pp. 802-808
[12]
N. de Carvalho, F. Farnetani, S. Ciardo, C. Ruini, A.M. Witkowski, C. Longo, et al.
Reflectance confocal microscopy correlates of dermoscopic patterns of facial lesions help to discriminate lentigo maligna from pigmented nonmelanocytic macules.
Br J Dermatol., 173 (2015), pp. 128-133
[13]
S. Borsari, R. Pampena, E. Benati, C. Bombonato, A. Kyrgidis, E. Moscarella, et al.
In vivo dermoscopic and confocal microscopy multistep algorithm to detect in situ melanomas.
Br J Dermatol., 179 (2018), pp. 163-172
[14]
C.A. Charles, A.A. Marghoob, K.J. Busam, L. Clark-Loeser, A.C. Halpern.
Melanoma or pigmented basal cell carcinoma: A clinical-pathologic correlation with dermoscopy, in vivo confocal scanning laser microscopy, and routine histology.
Skin Res Technol., 8 (2002), pp. 282-287
[15]
S. Gonzalez, Z. Tannous.
Real-time, in vivo confocal reflectance microscopy of basal cell carcinoma.
J Am Acad Dermatol., 47 (2002), pp. 869-874
[16]
S. Nori, F. Rius-Díaz, J. Cuevas, M. Goldgeier, P. Jaen, A. Torres, et al.
Sensitivity and specificity of reflectance-mode confocal microscopy for in vivo diagnosis of basal cell carcinoma: a multicenter study.
J Am Acad Dermatol., 51 (2004), pp. 923-930
[17]
A.L. Agero, K.J. Busam, C. Benvenuto-Andrade, A. Scope, M. Gill, A.A. Marghoob, et al.
Reflectance confocal microscopy of pigmented basal cell carcinoma.
J Am Acad Dermatol., 54 (2006), pp. 638-643
[18]
M. Ulrich, J. Roewert-Huber, S. Gonzalez, F. Rius-Diaz, E. Stockfleth, J. Kanitakis.
Peritumoral clefting in basal cell carcinoma: Correlation of in vivo reflectance confocal microscopy and routine histology.
J Cutan Pathol., 38 (2011), pp. 190-195
[19]
M. Peppelman, E.A. Wolberink, W.A. Blokx, P.C. van de Kerkhof, P.E. van Erp, M.J. Gerritsen.
In vivo diagnosis of basal cell carcinoma subtype by reflectance confocal microscopy.
Dermatology., 227 (2013), pp. 255-262
[20]
C. Longo, A. Lallas, A. Kyrgidis, H. Rabinovitz, E. Moscarella, S. Ciardo, et al.
Classifying distinct basal cell carcinoma subtype by means of dermatoscopy and reflectance confocal microscopy.
J Am Acad Dermatol., 71 (2014), pp. 716-724.e1
[21]
R.P. Castro, A. Stephens, N.A. Fraga-Braghiroli, M.C. Oliviero, G.G. Rezze, H. Rabinovitz, et al.
Accuracy of in vivo confocal microscopy for diagnosis of basal cell carcinoma: a comparative study between handheld and wide-probe confocal imaging.
J Eur Acad Dermatol Venereol., 29 (2015), pp. 1164-1169
[22]
E. Cinotti, C. Jaffelin, V. Charriere, P. Bajard, B. Labeille, A. Witkowski, F. Cambazard, et al.
Sensitivity of handheld reflectance confocal microscopy for the diagnosis of basal cell carcinoma: A series of 344 histologically proven lesions.
J Am Acad Dermatol., 73 (2015), pp. 319-320
[23]
D. Aghassi, R.R. Anderson, S. Gonzalez.
Confocal laser microscopic imaging of actinic keratoses in vivo: A preliminary report.
J Am Acad Dermatol., 43 (2000), pp. 42-48
[24]
M. Ulrich, A. Maltusch, J. Röwert-Huber, S. González, W. Sterry, E. Stockfleth, et al.
Actinic keratoses: non-invasive diagnosis for field cancerisation.
Br J Dermatol., 156 Suppl3 (2007), pp. 13-17
[25]
M. Horn, A. Gerger, V. Ahlgrimm-Siess, W. Weger, S. Koller, H. Kerl, et al.
Discrimination of actinic keratoses from normal skin with reflectance mode confocal microscopy.
Dermatol Surg., 34 (2008), pp. 620-625
[26]
A. Rishpon, N. Kim, A. Scope, L. Porges, M.C. Oliviero, R.P. Braun, et al.
Reflectance confocal microscopy criteria for squamous cell carcinomas and actinic keratoses.
Arch Dermatol., 145 (2009), pp. 766-772
[27]
M. Ulrich, J. Kanitakis, S. Gonzalez, S. Lange-Asschenfeldt, E. Stockfleth, J. Roewert-Huber.
Evaluation of Bowen disease by in vivo reflectance confocal microscopy.
Br J Dermatol., 166 (2012), pp. 451-453
[28]
M. Peppelman, K.P. Nguyen, L. Hoogedoorn, P.E. van Erp, M.J. Gerritsen.
Reflectance confocal microscopy: Non-invasive distinction between actinic keratosis and squamous cell carcinoma.
J Eur Acad Dermatol Venereol., 29 (2015), pp. 1302-1309
[29]
E. Moscarella, H. Rabinovitz, I. Zalaudek, S. Piana, I. Stanganelli, M.C. Oliviero, et al.
Dermoscopy and reflectance confocal microscopy of pigmented actinic keratoses: a morphological study.
J Eur Acad Dermatol Venereol., 29 (2015), pp. 307-314
[30]
M. Manfredini, C. Longo, B. Ferrari, S. Piana, E. Benati, A. Casari, et al.
Dermoscopic and reflectance confocal microscopy features of cutaneous squamous cell carcinoma.
J Eur Acad Dermatol Venereol., 31 (2017), pp. 1828-1833
[31]
N. Shahriari, J.M. Grant-Kels, H.S. Rabinovitz, M. Oliviero, A. Scope.
Reflectance confocal microscopy criteria of pigmented squamous cell carcinoma in situ.
Am J Dermatopathol., 40 (2018), pp. 173-179
[32]
V. Ahlgrimm-Siess, T. Cao, M. Oliviero, M. Laimer, R. Hofmann-Wellenhof, H.S. Rabinovitz, et al.
Seborrheic keratosis: reflectance confocal microscopy features and correlation with dermoscopy.
J Am Acad Dermatol., 69 (2013), pp. 120-126
[33]
C. Pezzini, V.D. Mandel, F. Persechino, S. Ciardo, S. Kaleci, J. Chester, et al.
Seborrheic keratoses mimicking melanoma unveiled by in vivo reflectance confocal microscopy.
Skin Res Technol., 24 (2018), pp. 285-293
[34]
S. Bassoli, H.S. Rabinovitz, G. Pellacani, L. Porges, M.C. Oliviero, R.P. Braun, et al.
Reflectance confocal microscopy criteria of lichen planus-like keratosis.
J Eur Acad Dermatol Venereol., 26 (2012), pp. 578-590
[35]
G. Pellacani, A. Scope, S. Gonzalez, P. Guitera, F. Farnetani, J. Malvehy, et al.
Reflectance confocal microscopy made easy: The 4 must-know key features for the diagnosis of melanoma and nonmelanoma skin cancers.
J Am Acad Dermatol., 81 (2019), pp. 520-526
[36]
Y.D. Xiong, S. Ma, X. Li, X. Zhong, C. Duan, Q. Chen.
A meta-analysis of reflectance confocal microscopy for the diagnosis of malignant skin tumours.
J Eur Acad Dermatol Venereol., 30 (2016), pp. 1295-1302
[37]
J. Dinnes, J.J. Deeks, D. Saleh, N. Chuchu, S.E. Bayliss, L. Patel, et al.
Cochrane Skin Cancer Diagnostic Test Accuracy Group. Reflectance confocal microscopy for diagnosing cutaneous melanoma in adults.
Cochrane Database Syst Rev., 12 (2018),
[38]
J. Dinnes, J.J. Deeks, N. Chuchu, D. Saleh, S.E. Bayliss, Y. Takwoingi, Cochrane Skin Cancer Diagnostic Test Accuracy Group, et al.
Reflectance confocal microscopy for diagnosing keratinocyte skin cancers in adults.
Cochrane Database Syst Rev., 12 (2018),
[39]
M. Lupu, I.M. Popa, V.M. Voiculescu, A. Caruntu, C. Caruntu.
A systematic review and meta-analysis of the accuracy of in vivoreflectance confocal microscopy for the diagnosis of primary basal cell carcinoma.
J Clin Med., 8 (2019), pp. 1462
[40]
C. Pezzini, S. Kaleci, J. Chester, F. Farnetani, C. Longo, G. Pellacani.
Reflectance confocal microscopy diagnostic accuracy for malignant melanoma in different clinical settings: Systematic review and meta-analysis.
J Eur Acad Dermatol Venereol., 34 (2020), pp. 2268-2279
[41]
A. Scope, C. Benvenuto-Andrade, A.L. Agero, J. Malvehy, S. Puig, M. Rajadhyaksha, et al.
In vivo reflectance confocal microscopy imaging of melanocytic skin lesions: consensus terminology glossary and illustrative images.
J Am Acad Dermatol., 57 (2007), pp. 644-658
[42]
C. Navarrete-Dechent, K. Liopyris, J. Monnier, S. Aleissa, L.M. Boyce, C. Longo, et al.
Reflectance confocal microscopy terminology glossary for melanocytic skin lesions: A systematic review.
J Am Acad Dermatol., 84 (2021), pp. 102-119
[43]
C. Navarrete-Dechent, A.P. DeRosa, C. Longo, K. Liopyris, M. Oliviero, H. Rabinovitz, et al.
Reflectance confocal microscopy terminology glossary for nonmelanocytic skin lesions: A systematic review.
J Am Acad Dermatol., 80 (2019), pp. 1414-1427.e3
[44]
C. Cuenca-Barrales, A. Molina-Leyva, D. Moreno-Ramírez, P. de la Cueva, Y. Gilaberte, S. Arias-Santiago.
Dermatology care in spanish public hospitals: A mapping study of health care resources and medical and surgical activity in dermatology departments in 2019.
Actas Dermosifiliogr., 113 (2022), pp. 467-480
[45]
M. Mazzeo, V. Manfreda, E. Botti, L. Bianchi.
The role of reflectance confocal microscopy on diagnosis of melanoacanthoma.
Actas Dermosifiliogr (Engl Ed)., 112 (2021),
[46]
M. Mazzeo, V. Manfreda, E. Botti, L. Bianchi.
Papel de la microscopia confocal de reflectancia en el diagnóstico del melanoacantoma.
Actas Dermosifiliogr., 112 (2021),
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